fcmedicineФундаментальная и клиническая медицинаFundamental and Clinical Medicine2500-07642542-0941КемГМУ10.23946/2500-0764-2026-11-1-135-141fcmedicine-1161Research ArticleЭПИДЕМИОЛОГИЯEPIDEMIOLOGYВыявление вируса иммунодефицита человека в трупной крови: новые возможности для оптимизации система эпидемиологического надзора и безопасностиDetection of Hhuman Immunodeficiency Virus in Corpsic Blood: New Opportunities for Optimizing Epidemiological Surveillance and Safety Systemshttps://orcid.org/0000-0003-4402-279XМельниковаЕ. Н.MelnikovaE. N.

Мельникова Елена Николаевна, ассистент кафедры гигиены, экологии и эпидемиологии; специалист

ул. Одесская, д. 54, г. Тюмень, 625023 

ул. Новая, д. 2, стр. 3, г. Тюмень, 625025 

Dr. Elena N. Melnikova, MD, Assistant Professor, Department of Hygiene, Ecology and Epidemiology; Specialist 

Odesskaya Street, 54, Tyumen, 625023 

Novaya Street, 2/3, Tyumen, 625025 

meinikova-elena@bk.ruhttps://orcid.org/0000-0002-8286-0279МарченкоА. Н.MarchenkoA. N.

Марченко Александр Николаевич, доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой гигиены, экологии и эпидемиологии

ул. Одесская, д. 54, г. Тюмень, 625023 

Dr. Alexander N. Marchenko, MD, Dr. Sci. (Medicine), Assistant professor, Head of the Department of Hygiene, Ecology and Epidemiology

Odesskaya Street, 54, Tyumen, 625023 

Тюменский государственный медицинский университет ; Центр профилактики и борьбы со СПИДРоссияTyumen State Medical University ; Tyumen Center for AIDS Prevention and ControlRussian FederationТюменский государственный медицинский университетРоссияTyumen State Medical UniversityRussian Federation202622032026111135141Copyright © Мельникова Е.Н., Марченко А.Н., 20262026Мельникова Е.Н., Марченко А.Н.Melnikova E.N., Marchenko A.N.Данная работа распространяется под лицензией Creative Commons Attribution 4.0.This work is licensed under a Creative Commons Attribution 4.0 License.https://fcm.kemsmu.ru/jour/article/view/1161Цель

Цель. Определение антител к ВИЧ, уровень вирусной нагрузки в образцах трупной крови у лиц с недиагностированной при жизни ВИЧ-инфекцией и предложение мер по оптимизации системы эпидемиологического надзора и безопасности.

Материалы и методы

Материалы и методы. Проведён целенаправленный скрининг 710 образцов трупной крови, поступивших из бюро судебно-медицинской экспертизы. Забор крови осуществляли из полостей сердца или крупных сосудов в соответствии с нормативными документами Минздрава России. Точное время взятия образцов относительно момента смерти не фиксировалось, однако оно, как правило, происходило в течение нескольких часов после констатации смерти. Прижизненный ВИЧ-статус умерших не был известен. Всего проанализировано 710 образцов; ВИЧ подтверждён в 1,5 % случаев (n = 11). Первичное выявление антител к ВИЧ-1/2 и антигена p24 осуществлялось с помощью иммуноферментной тест-системы «МилаЛаб-ИФА-ВИЧ-Аг+Ат». Подтверждение серопозитивности и определение профиля антител выполняли методом иммунного блоттинга с использованием набора «МилаБлот-ВИЧ». Для оценки эпидемиологического риска у серопозитивных лиц проводили количественное определение РНК ВИЧ-1 методом ПЦР (набор «АмплиСенс ВИЧ-МОНИТОР-FRT»). Вирусную нагрузку не удалось определить в двух пробах из-за гемолиза.

Результаты

Результаты. Положительный иммунный блоттинг к ВИЧ был выявлен в 1,5 % проб. Антитела к белкам gp160 и gp41 обнаружены в 100 % случаев, к gp120, p31 и gag24 − в 91 %, к gp36 − в 27 % (3/11), к p51/66 и gag17 − в 64% (7/11). При определении вирусной нагрузки результаты составили от 48 до 390 000 копий/мл. В абсолютном большинстве случаев (78 %) вирусная нагрузка превышала 1000 копий/мл, что свидетельствует о высоких рисках передачи ВИЧ-инфекции.

Заключение

Заключение. Полученные данные подтверждают необходимость валидизации существующих тест-систем для посмертной диагностики ВИЧ-инфекции, разработки алгоритма эпидемиологического выявления случаев заражения ВИЧ в трупной крови и обследования контактных лиц первой линии, а также усиления мер эпидемиологической безопасности для танатологов и медицинского персонала при работе с трупным материалом.

Aim

Aim. To determine HIV antibodies and viral load levels in cadaveric blood samples from individuals with undiagnosed HIV infection during their lifetime, and to propose measures to optimize the system of epidemiological surveillance and safety.

Materials and methods

Materials and methods. A targeted screening of 710 cadaveric blood samples was conducted, received from the forensic medical examination bureau. Blood sampling was performed from the heart cavities or large vessels in accordance with the regulatory documents of the Russian Ministry of Health. The exact time of sample collection relative to the moment of death was not recorded, but it typically occurred within several hours after death was confirmed. The lifetime HIV status of the deceased was unknown. A total of 710 samples were analyzed; HIV was confirmed in 1.5 % of cases (n = 11). Primary detection of HIV-1/2 antibodies and p24 antigen was performed using the “MilaLab-ELISA-HIV-Ag+At” enzyme immunoassay test system. Seropositivity confirmation and antibody profile determination were performed using immune blot testing with the “MilaBlot-HIV” kit. To assess epidemiological risk in seropositive individuals, quantitative determination of HIV-1 RNA was performed using PCR (“AmpliSense HIV-MONITOR-FRT” kit). Viral load could not be determined in two samples due to hemolysis.

Results

Results. Positive immune blot for HIV was detected in 1.5% of samples. Antibodies to gp160 and gp41 proteins were detected in 100 % of cases, to gp120, p31, and gag24 − in 91 %, to gp36 − in 27 % (3/11), to p51/66 and gag17 − in 64 % (7/11). Viral load results ranged from 48 to 390,000 copies/ ml. In the vast majority of cases (78 %), the viral load exceeded 1,000 copies/ml, indicating high risks of HIV transmission.

Conclusion

Conclusion. The obtained data indicate the need for validation of existing test systems for postmortem HIV diagnosis; development of an algorithm for epidemiological detection of HIV infection cases in cadaveric blood; examination of first-line contact persons; strengthening epidemiological safety measures for thanatologists and medical personnel when working with cadaveric material.

ВИЧ-инфекциятрупная кровьиммунный блоттингвирусная нагрузкаэпидемиологический надзорвалидизация тест-системHIV infectioncadaveric bloodimmunoblottingviral loadepidemiological surveillancetest system validationReferencesЛещинская Н.П., Смольская Т.Т. Посмертное определение антитела к вирусу иммунодефицита человека. Клиническая лабораторная диагностика. 1993;(3):47–50.Leshchinskaya N.P., Smol'skaya T.T. Posmertnoe opredelenie antitela k virusu immunodeficita cheloveka. Klinicheskaya laboratornaya diagnostika. 1993;(3):47–50. (In Russ.).Heim A., Wagner D., Rothämel T., Hartmann U., Flik J., Verhagen W. Evaluation of serological screening of cadaveric sera for donor selection for cornea transplantation. J. Med. Virol. 1999;58(3):291– 295. https://doi.org/10.1002/(sici)1096-9071(199907)58:3<291::aidjmv16>3.0.co;2Heim A., Wagner D., Rothämel T., Hartmann U., Flik J., Verhagen W. Evaluation of serological screening of cadaveric sera for donor selection for cornea transplantation. J. Med. Virol. 1999;58(3):291– 295. https://doi.org/10.1002/(sici)1096-9071(199907)58:3<291::aidjmv16>3.0.co;2Pepose JS, Pardo F, Kessler JA, Kline R, Donegan E, Quinn TC. Screening cornea donors for antibodies against human immunodeficiency virus. Efficacy of ELISA testing of cadaveric sera and aqueous humor. Ophthalmology. 1987;94(2):95–100. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(87)33489-xPepose JS, Pardo F, Kessler JA, Kline R, Donegan E, Quinn TC. Screening cornea donors for antibodies against human immunodeficiency virus. Efficacy of ELISA testing of cadaveric sera and aqueous humor. Ophthalmology. 1987;94(2):95–100. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(87)33489-xDuma S.M., Rudd R.W., Crandall J.R. A protocol system for testing biohazardous materials in an impact biomechanics research facility. Am. Ind. Hyg. Assoc. J. 1999;60(5):629–634. https://doi.org/10.1080/00028899908984483Duma S.M., Rudd R.W., Crandall J.R. A protocol system for testing biohazardous materials in an impact biomechanics research facility. Am. Ind. Hyg. Assoc. J. 1999;60(5):629–634. https://doi.org/10.1080/00028899908984483Borchi B., Ambu S., Bresci S., Zanazzi M., Salvadori M., Leoncini F. Case report: HIV infection from a kidney transplant. Transplant. Proc. 2010;42(6):226–229. https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2010.05.026Borchi B., Ambu S., Bresci S., Zanazzi M., Salvadori M., Leoncini F. Case report: HIV infection from a kidney transplant. Transplant. Proc. 2010;42(6):226–229. https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2010.05.026Edler C., Wulff B., Schröder A.S., Wilkemeyer I., Polywka S., Meyer T., et al. A prospective time-course study on serological testing for human immunodeficiency virus, hepatitis B virus and hepatitis C virus with blood samples taken up to 48 h after death. J. Med. Microbiol. 2011;60(Pt 7):920–926. https://doi.org/10.1099/jmm.0.027763-0Edler C., Wulff B., Schröder A.S., Wilkemeyer I., Polywka S., Meyer T., et al. A prospective time-course study on serological testing for human immunodeficiency virus, hepatitis B virus and hepatitis C virus with blood samples taken up to 48 h after death. J. Med. Microbiol. 2011;60(Pt 7):920–926. https://doi.org/10.1099/jmm.0.027763-0Baleriola C., Johal H., Robertson P., Jacka B., Whybin R., Taylor P., et al. Infectious disease screening of blood specimens collected postmortem provides comparable results to pre-mortem specimens. Cell Tissue Bank. 2012;13(2):251–258. https://doi.org/10.1007/s10561-011-9252-6Baleriola C., Johal H., Robertson P., Jacka B., Whybin R., Taylor P., et al. Infectious disease screening of blood specimens collected postmortem provides comparable results to pre-mortem specimens. Cell Tissue Bank. 2012;13(2):251–258. https://doi.org/10.1007/s10561-011-9252-6Greenwald M.A., Kerby S., Francis K., Noller A.C., Gormley W.T., Biswas R., et al. Detection of human immunodeficiency virus, hepatitis C virus, and hepatitis B virus in postmortem blood specimens using infectious disease assays licensed for cadaveric donor screening. Transpl. Infect. Dis. 2018;20(1). https://doi.org/10.1111/tid.12825Greenwald M.A., Kerby S., Francis K., Noller A.C., Gormley W.T., Biswas R., et al. Detection of human immunodeficiency virus, hepatitis C virus, and hepatitis B virus in postmortem blood specimens using infectious disease assays licensed for cadaveric donor screening. Transpl. Infect. Dis. 2018;20(1). https://doi.org/10.1111/tid.12825Ribeiro V.S.T., Raboni S.M., Suss P.H., Cieslinski J., Kraft L., Dos Santos J.S., et al. Detection and quantification of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus in cadaveric tissue donors using different molecular tests. J. Clin. Virol. 2019;121:104203. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2019.104203Ribeiro V.S.T., Raboni S.M., Suss P.H., Cieslinski J., Kraft L., Dos Santos J.S., et al. Detection and quantification of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus in cadaveric tissue donors using different molecular tests. J. Clin. Virol. 2019;121:104203. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2019.104203Kok C.C., Ramachandran V., Egilmezer E., Ray S., Walker G.J., Rawlinson W.D. Serological testing for infectious diseases markers of donor specimens from 24 h after death show no significant change in outcomes from other specimens. Cell. Tissue Bank. 2020;21(2):171–179. https://doi.org/10.1007/s10561-020-09810-xKok C.C., Ramachandran V., Egilmezer E., Ray S., Walker G.J., Rawlinson W.D. Serological testing for infectious diseases markers of donor specimens from 24 h after death show no significant change in outcomes from other specimens. Cell. Tissue Bank. 2020;21(2):171–179. https://doi.org/10.1007/s10561-020-09810-xKohmer N., Kortenbusch M., Berger A., Rühl C., Ciesek S., Salla S., et al. Suitability of Different Diagnostic Platforms for Virological Testing of Blood Samples from Cornea Donors. Transfus. Med. Hemother. 2022;49(6):379–387. https://doi.org/10.1159/000524250Kohmer N., Kortenbusch M., Berger A., Rühl C., Ciesek S., Salla S., et al. Suitability of Different Diagnostic Platforms for Virological Testing of Blood Samples from Cornea Donors. Transfus. Med. Hemother. 2022;49(6):379–387. https://doi.org/10.1159/000524250Stanworth S.J., Warwick R.M., Ferguson M., Barbara J.A. A UK survey of virological testing of cadaver tissue donors. Microbiology Working Group of the NIBSC steering group on Tissue/Cell Banking and Engineering. Vox Sang. 2000;79(4):227–230. https://doi.org/10.1159/000056735Stanworth S.J., Warwick R.M., Ferguson M., Barbara J.A. A UK survey of virological testing of cadaver tissue donors. Microbiology Working Group of the NIBSC steering group on Tissue/Cell Banking and Engineering. Vox Sang. 2000;79(4):227–230. https://doi.org/10.1159/000056735Gubbe K., Scharnagl Y., Grosch S., Tonn T., Schmidt M., Hourfar K.M., et al. Validation of Virus NAT for HIV, HCV, HBV and HAV Using Post-Mortal Blood Samples. Transfus. Med. Hemother. 2012;39(6):381–385. https://doi.org/10.1159/000345319Gubbe K., Scharnagl Y., Grosch S., Tonn T., Schmidt M., Hourfar K.M., et al. Validation of Virus NAT for HIV, HCV, HBV and HAV Using Post-Mortal Blood Samples. Transfus. Med. Hemother. 2012;39(6):381–385. https://doi.org/10.1159/000345319Schmack I., Ballikaya S., Erber B., Voehringer I., Burkhardt U., Auffarth G.U., et al. Validation of Spiked Postmortem Blood Samples from Cornea Donors on the Abbott ARCHITECT and m2000 Systems for Viral Infections. Transfus. Med. Hemother. 2020;47(3):236–242. https://doi.org/10.1159/000502866Schmack I., Ballikaya S., Erber B., Voehringer I., Burkhardt U., Auffarth G.U., et al. Validation of Spiked Postmortem Blood Samples from Cornea Donors on the Abbott ARCHITECT and m2000 Systems for Viral Infections. Transfus. Med. Hemother. 2020;47(3):236–242. https://doi.org/10.1159/000502866Nyamweya S., Hegedus A., Jaye A., Rowland-Jones S., Flanagan K.L., Macallan D.C. Comparing HIV-1 and HIV-2 infection: Lessons for viral immunopathogenesis. Rev. Med. Virol. 2013;23(4):221–240. https://doi.org/10.1002/rmv.1739Nyamweya S., Hegedus A., Jaye A., Rowland-Jones S., Flanagan K.L., Macallan D.C. Comparing HIV-1 and HIV-2 infection: Lessons for viral immunopathogenesis. Rev. Med. Virol. 2013;23(4):221–240. https://doi.org/10.1002/rmv.1739Azevedo-Pereira J.M., Santos-Costa Q. HIV Interaction With Human Host: HIV-2 As a Model of a Less Virulent Infection. AIDS Rev. 2016;18(1):44–53. PMID: 26936760Azevedo-Pereira J.M., Santos-Costa Q. HIV Interaction With Human Host: HIV-2 As a Model of a Less Virulent Infection. AIDS Rev. 2016;18(1):44–53. PMID: 26936760Visseaux B., Le Hingrat Q., Damond F., Charpentier C., Descamps D. Physiopathologie de l’infection par le VIH-2 [Physiopathology of HIV-2 infection]. Virologie (Montrouge). 2019;23(5):277–291. https://doi.org/10.1684/vir.2019.0789Visseaux B., Le Hingrat Q., Damond F., Charpentier C., Descamps D. Physiopathologie de l’infection par le VIH-2 [Physiopathology of HIV-2 infection]. Virologie (Montrouge). 2019;23(5):277–291. https://doi.org/10.1684/vir.2019.0789Рязанова Г.А., Коксин В.П., Хамзина Р.В. «Свободные» И «Связанные» антитела к структурным белкам ВИЧ-1 в ранний период заболевания. Медицинская иммунология. 2005;7(1):73–76. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2005-1-73-76).Ryazanova G.A., Koksin V.P., Hamzina R.V. «Svobodnye» I «Svyazannye» antitela k strukturnym belkam VICh-1 v rannij period zabolevaniya. Medicinskaya immunologiya. 2005;7(1):73–76. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2005-1-73-76)

The authors declare that there are no conflicts of interest present.