Эндотелиальные клетки артериальной и венозной крови у пациентов с разными формами ишемической болезни сердца как возможный показатель устойчивости морфофункциональной системы кондуит-артерия

Цель. Провести оценку количества, качественного состава и пролиферативного потенциала эндотелиальных клеток крови, забранной из коронарной артерии (КА), внутренней грудной артерии (ВГА), лучевой артерии (ЛА) и венозного русла у пациентов с ОКС и хронической ИБС.

Материалы и методы. В работе были исследованы восемь биологических образцов крови, полученных от двух пациентов-мужчин: 72 лет с ОКС и 63 лет со стабильной ИБС. У каждого пациента забирали по 20 мл венозной крови из кубитальной вены и по 20 мл артериальной — из внутренней грудной, лучевой и коронарной артерий. Из крови выделяли мононуклеарную фракцию, подсчитывали клетки и культивировали их in vitro. Результаты. В течение 26 суток культивирования проводили подсчёт клеток во флаконах. Наибольшая пролиферативная активность КФЭК отмечена у пациента с ОКС: время удвоения популяции (PDT) оставило 2,17 суток для клеток, выделенных из крови КА, и 2,38 суток — из ВГА. У пациента с хронической ИБС PDT КФЭК, полученных из венозной крови, было выше — 2,54 суток. Наибольшая концентрация КФЭК зарегистрирована у пациента с ОКС в крови инфаркт-связанной КА.

Заключение. Анализ эндотелиальных клеток, выделенных из крови КА и кондуитных сосудов при КШ, показал различия, зависящие от формы ИБС. У пациента с ОКС отмечено сходство характеристик и роста ЭК КА и ВГА, что может отражать однонаправленность репаративных процессов и повышенную устойчивость МФС кондуит-артерия при использовании данных аутоартериальных графтов.

1. Фролов А. В. Морфофункциональная система кондуит-артерия: клинико-патофизиологическая концепция как основа эффективности аутоартериального коронарного шунтирования: дис. … док. мед. наук. Кемерово, 2023. 388 с

2. Panagiotopoulos I., Leivaditis V., Sawafta A., Katinioti A., Tasios K., Garantzioti V. et al. The choice of conduits in coronary artery bypass surgery. Arch. Med. Sci. Atheroscler. Dis. 2023;30;8:e83–e88. https://doi.org/10.5114/amsad/170215

3. Фролов А. В. Морфофункциональная система кондуит-артерия при остром коронарном синдроме. Комплексные проблемы сердечно-сосудистых заболеваний. 2025;14(4):123–134. https://doi.org/10.17802/2306-1278-2025-14-4-123-134

4. Kakar H., Groenland F. T. W., Elscot J. J., Rinaldi R., Scoccia A., Kardys I., et al. CT-LIFE Study Collaborators. Cognitive training for reduction of delirium in patients undergoing cardiac surgery: a randomized clinical trial. JAMA Netw. Open. 2024;7(4):e247361. https://doi.org/10.1016/j.amjcard.2023.03.005

5. He G. W., Taggart D. P. Spasm in Arterial Grafts in Coronary Artery Bypass Grafting Surgery. Ann. Thorac. Surg. 2016;101(3):1222–9. https://doi.org/10.1016/j.athoracsur.2015.09.071

6. Shadrin I. Y., Holmes D. R., Behfar A. Left Internal Mammary Artery as an Endocrine Organ: Insights Into Graft Biology and Long-term Impact Following Coronary Artery Bypass Grafting. Mayo Clin. Proc. 2023;98(1):150–162. https://doi.org/10.1016/j.mayocp.2022.10.003

7. Deidda M., Piras C., Binaghi G., Congia D., Pani A., Boi A., et al. Metabolomic fingerprint of coronary blood in STEMI patients depends on the ischemic time and inflammatory state. Sci. Rep. 2019;9(1):312. https://doi.org/10.1038/s41598-018-36415-y

8. Sesorova I. S., Bedyaev E. V., Vavilov P. S., Levin S. L., Mironov A. A. Regeneration of Vascular Endothelium in Different Large Vessels. Int. J. Mol. Sci. 2025;26(2):837. https://doi.org/10.3390/ijms26020837

9. Ingram D. A., Mead L. E., Tanaka H., Meade V., Fenoglio A., Mortell K., et al. Identification of a novel hierarchy of endothelial progenitor cells using human peripheral and umbilical cord blood. Blood. 2004;104(9):2752–2760. https://doi.org/10.1182/blood-2004-04-1396

10. Kalies K., Knöpp K., Wurmbrand L., Korte L., Dutzmann J., Pilowski C., et al. Isolation of circulating endothelial cells provides tool to determine endothelial cell senescence in blood samples. Sci. Rep. 2024;14(1):4271. https://doi.org/10.1038/s41598-024-54455-5

11. Melero-Martin J.M. Human Endothelial Colony-Forming Cells. Cold Spring Harb. Perspect. Med. 2022;12(12):a041154. https://doi.org/10.1101/cshperspect.a041154

12. Poduri A., Chang A. H., Raftrey B., Rhee S., Van M., Red-Horse K. Endothelial cells respond to the direction of mechanical stimuli through SMAD signaling to regulate coronary artery size. Development. 2017;144(18):3241–3252. https://doi.org/10.1242/dev.150904

13. Capasso T. L., Li B., Volek H. J., Khalid W., Rochon E. R., Anbalagan A., et al. BMP10-mediated ALK1 signaling is continuously required for vascular development and maintenance. Angiogenesis. 2020;23(2):203–220. https://doi.org/10.1007/s10456-019-09701-0

14. Frolov A., Lobov A., Kabilov M., Zainullina B., Tupikin A., Shishkova D., et al. Multi-Omics Profiling of Human Endothelial Cells from the Coronary Artery and Internal Thoracic Artery Reveals Molecular but Not Functional Heterogeneity. Int. J. Mol. Sci. 2023;24(19):15032. https://doi.org/10.3390/ijms241915032

15. Gaudino M., Antoniades C., Benedetto U., Deb S., Di Franco A., Di Giammarco G., et al. Mechanisms, Consequences, and Prevention of Coronary Graft Failure. Circulation. 2017;136(18):1749–1764. https://doi.org/10.1161/CIRCULATIONAHA.117.027597

16. Marsh N., Webster J., Ullman A. J., Mihala G., Cooke M., Chopra V., et al. Peripheral intravenous catheter non-infectious complications in adults: A systematic review and meta-analysis. J. Adv. Nurs. 2020;76(12):3346–3362. https://doi.org/10.1111/jan.14565

17. Abrashev H., Abrasheva D., Nikolov N., Ananiev J., Georgieva E. A Systematic Review of Endothelial Dysfunction in Chronic Venous Disease-Inflammation, Oxidative Stress, and Shear Stress. Int. J. Mol. Sci. 2025;26(8):3660. https://doi.org/10.3390/ijms26083660

18. Purohit M., Dunning J. Do coronary artery bypass grafts using cephalic veins have a satisfactory patency? Interact. Cardiovasc. Thorac. Surg. 2007;6(2):251–254. https://doi.org/10.1510/icvts.2006.149104