Preview

Фундаментальная и клиническая медицина

Расширенный поиск

Выявление вируса иммунодефицита человека в трупной крови: новые возможности для оптимизации система эпидемиологического надзора и безопасности

https://doi.org/10.23946/2500-0764-2026-11-1-135-141

Аннотация

Цель. Определение антител к ВИЧ, уровень вирусной нагрузки в образцах трупной крови у лиц с недиагностированной при жизни ВИЧ-инфекцией и предложение мер по оптимизации системы эпидемиологического надзора и безопасности.

Материалы и методы. Проведён целенаправленный скрининг 710 образцов трупной крови, поступивших из бюро судебно-медицинской экспертизы. Забор крови осуществляли из полостей сердца или крупных сосудов в соответствии с нормативными документами Минздрава России. Точное время взятия образцов относительно момента смерти не фиксировалось, однако оно, как правило, происходило в течение нескольких часов после констатации смерти. Прижизненный ВИЧ-статус умерших не был известен. Всего проанализировано 710 образцов; ВИЧ подтверждён в 1,5 % случаев (n = 11). Первичное выявление антител к ВИЧ-1/2 и антигена p24 осуществлялось с помощью иммуноферментной тест-системы «МилаЛаб-ИФА-ВИЧ-Аг+Ат». Подтверждение серопозитивности и определение профиля антител выполняли методом иммунного блоттинга с использованием набора «МилаБлот-ВИЧ». Для оценки эпидемиологического риска у серопозитивных лиц проводили количественное определение РНК ВИЧ-1 методом ПЦР (набор «АмплиСенс ВИЧ-МОНИТОР-FRT»). Вирусную нагрузку не удалось определить в двух пробах из-за гемолиза.

Результаты. Положительный иммунный блоттинг к ВИЧ был выявлен в 1,5 % проб. Антитела к белкам gp160 и gp41 обнаружены в 100 % случаев, к gp120, p31 и gag24 − в 91 %, к gp36 − в 27 % (3/11), к p51/66 и gag17 − в 64% (7/11). При определении вирусной нагрузки результаты составили от 48 до 390 000 копий/мл. В абсолютном большинстве случаев (78 %) вирусная нагрузка превышала 1000 копий/мл, что свидетельствует о высоких рисках передачи ВИЧ-инфекции.

Заключение. Полученные данные подтверждают необходимость валидизации существующих тест-систем для посмертной диагностики ВИЧ-инфекции, разработки алгоритма эпидемиологического выявления случаев заражения ВИЧ в трупной крови и обследования контактных лиц первой линии, а также усиления мер эпидемиологической безопасности для танатологов и медицинского персонала при работе с трупным материалом.

Об авторах

Е. Н. Мельникова
Тюменский государственный медицинский университет ; Центр профилактики и борьбы со СПИД
Россия

Мельникова Елена Николаевна, ассистент кафедры гигиены, экологии и эпидемиологии; специалист

ул. Одесская, д. 54, г. Тюмень, 625023 

ул. Новая, д. 2, стр. 3, г. Тюмень, 625025 



А. Н. Марченко
Тюменский государственный медицинский университет
Россия

Марченко Александр Николаевич, доктор медицинских наук, доцент, заведующий кафедрой гигиены, экологии и эпидемиологии

ул. Одесская, д. 54, г. Тюмень, 625023 



Список литературы

1. Лещинская Н.П., Смольская Т.Т. Посмертное определение антитела к вирусу иммунодефицита человека. Клиническая лабораторная диагностика. 1993;(3):47–50.

2. Heim A., Wagner D., Rothämel T., Hartmann U., Flik J., Verhagen W. Evaluation of serological screening of cadaveric sera for donor selection for cornea transplantation. J. Med. Virol. 1999;58(3):291– 295. https://doi.org/10.1002/(sici)1096-9071(199907)58:3<291::aidjmv16>3.0.co;2

3. Pepose JS, Pardo F, Kessler JA, Kline R, Donegan E, Quinn TC. Screening cornea donors for antibodies against human immunodeficiency virus. Efficacy of ELISA testing of cadaveric sera and aqueous humor. Ophthalmology. 1987;94(2):95–100. https://doi.org/10.1016/s0161-6420(87)33489-x

4. Duma S.M., Rudd R.W., Crandall J.R. A protocol system for testing biohazardous materials in an impact biomechanics research facility. Am. Ind. Hyg. Assoc. J. 1999;60(5):629–634. https://doi.org/10.1080/00028899908984483

5. Borchi B., Ambu S., Bresci S., Zanazzi M., Salvadori M., Leoncini F. Case report: HIV infection from a kidney transplant. Transplant. Proc. 2010;42(6):226–229. https://doi.org/10.1016/j.transproceed.2010.05.026

6. Edler C., Wulff B., Schröder A.S., Wilkemeyer I., Polywka S., Meyer T., et al. A prospective time-course study on serological testing for human immunodeficiency virus, hepatitis B virus and hepatitis C virus with blood samples taken up to 48 h after death. J. Med. Microbiol. 2011;60(Pt 7):920–926. https://doi.org/10.1099/jmm.0.027763-0

7. Baleriola C., Johal H., Robertson P., Jacka B., Whybin R., Taylor P., et al. Infectious disease screening of blood specimens collected postmortem provides comparable results to pre-mortem specimens. Cell Tissue Bank. 2012;13(2):251–258. https://doi.org/10.1007/s10561-011-9252-6

8. Greenwald M.A., Kerby S., Francis K., Noller A.C., Gormley W.T., Biswas R., et al. Detection of human immunodeficiency virus, hepatitis C virus, and hepatitis B virus in postmortem blood specimens using infectious disease assays licensed for cadaveric donor screening. Transpl. Infect. Dis. 2018;20(1). https://doi.org/10.1111/tid.12825

9. Ribeiro V.S.T., Raboni S.M., Suss P.H., Cieslinski J., Kraft L., Dos Santos J.S., et al. Detection and quantification of human immunodeficiency virus and hepatitis C virus in cadaveric tissue donors using different molecular tests. J. Clin. Virol. 2019;121:104203. https://doi.org/10.1016/j.jcv.2019.104203

10. Kok C.C., Ramachandran V., Egilmezer E., Ray S., Walker G.J., Rawlinson W.D. Serological testing for infectious diseases markers of donor specimens from 24 h after death show no significant change in outcomes from other specimens. Cell. Tissue Bank. 2020;21(2):171–179. https://doi.org/10.1007/s10561-020-09810-x

11. Kohmer N., Kortenbusch M., Berger A., Rühl C., Ciesek S., Salla S., et al. Suitability of Different Diagnostic Platforms for Virological Testing of Blood Samples from Cornea Donors. Transfus. Med. Hemother. 2022;49(6):379–387. https://doi.org/10.1159/000524250

12. Stanworth S.J., Warwick R.M., Ferguson M., Barbara J.A. A UK survey of virological testing of cadaver tissue donors. Microbiology Working Group of the NIBSC steering group on Tissue/Cell Banking and Engineering. Vox Sang. 2000;79(4):227–230. https://doi.org/10.1159/000056735

13. Gubbe K., Scharnagl Y., Grosch S., Tonn T., Schmidt M., Hourfar K.M., et al. Validation of Virus NAT for HIV, HCV, HBV and HAV Using Post-Mortal Blood Samples. Transfus. Med. Hemother. 2012;39(6):381–385. https://doi.org/10.1159/000345319

14. Schmack I., Ballikaya S., Erber B., Voehringer I., Burkhardt U., Auffarth G.U., et al. Validation of Spiked Postmortem Blood Samples from Cornea Donors on the Abbott ARCHITECT and m2000 Systems for Viral Infections. Transfus. Med. Hemother. 2020;47(3):236–242. https://doi.org/10.1159/000502866

15. Nyamweya S., Hegedus A., Jaye A., Rowland-Jones S., Flanagan K.L., Macallan D.C. Comparing HIV-1 and HIV-2 infection: Lessons for viral immunopathogenesis. Rev. Med. Virol. 2013;23(4):221–240. https://doi.org/10.1002/rmv.1739

16. Azevedo-Pereira J.M., Santos-Costa Q. HIV Interaction With Human Host: HIV-2 As a Model of a Less Virulent Infection. AIDS Rev. 2016;18(1):44–53. PMID: 26936760

17. Visseaux B., Le Hingrat Q., Damond F., Charpentier C., Descamps D. Physiopathologie de l’infection par le VIH-2 [Physiopathology of HIV-2 infection]. Virologie (Montrouge). 2019;23(5):277–291. https://doi.org/10.1684/vir.2019.0789

18. Рязанова Г.А., Коксин В.П., Хамзина Р.В. «Свободные» И «Связанные» антитела к структурным белкам ВИЧ-1 в ранний период заболевания. Медицинская иммунология. 2005;7(1):73–76. https://doi.org/10.15789/1563-0625-2005-1-73-76).


Рецензия

Для цитирования:


Мельникова Е.Н., Марченко А.Н. Выявление вируса иммунодефицита человека в трупной крови: новые возможности для оптимизации система эпидемиологического надзора и безопасности. Фундаментальная и клиническая медицина. 2026;11(1):135-141. https://doi.org/10.23946/2500-0764-2026-11-1-135-141

For citation:


Melnikova E.N., Marchenko A.N. Detection of Hhuman Immunodeficiency Virus in Corpsic Blood: New Opportunities for Optimizing Epidemiological Surveillance and Safety Systems. Fundamental and Clinical Medicine. 2026;11(1):135-141. (In Russ.) https://doi.org/10.23946/2500-0764-2026-11-1-135-141

Просмотров: 77

JATS XML


Creative Commons License
Контент доступен под лицензией Creative Commons Attribution 4.0 License.


ISSN 2500-0764 (Print)
ISSN 2542-0941 (Online)